蛋白提取及WB

• 前处理-蛋白提取；
• 分离：SDS-PAGE
• 成像：转膜、WB

蛋白提取

1. 移液枪转移12孔板中cell培养液到ep管中，底部留存部分液态培养基；
2. 胰酶或者细胞刮板分离底部粘璧cell，移液枪转移至上述ep管中。流式不可采用刮板，会损伤cell；刮板用PBS清洗；
3. 离心2k rpm 3min，弃去上清，PBS重悬，n合1，再次离心，弃上清，清洗cell
4. 按照12孔板每孔cell加入25 ul裂解液的比例向ep管加入cell裂解液，4 ℃裂解10-30min、离心15min。（6孔板每孔50ul裂解液）
5. 用上清稀释loading buffer(按照loading buffer 的要求），金属浴or沸水浴 5 - 10min，防止ep管加热过程开盖
6. -40--80℃保存，防止降解

SDS-PAGE

制胶

1. 支架下方垫橡胶垫实现密封，薄板朝外装载玻璃板，吸头辅助夹紧

   

   SDS-PAGE制胶装置

2. 配制电泳液：每次用量约1.5 L

   1.5L SDS-PAGE电泳液组成
   Reagent	Quantity (for 1.5 L)
   Tris	4.545 g
   甘氨酸	21.6 g
   SDS	1.5 g
   UP水	1.5 L

3. 根据目标蛋白的分子量，按照制胶试剂说明书调配试剂，制作分离胶和浓缩胶，倒入玻璃板，插入梳子。

   

   SDS-PAGE凝胶比例

4. 凝固后，将玻璃板转移至电泳槽中，薄板向里，向夹层中倒入电泳液，验漏(是否夹紧，否则电泳时功率不稳)
5. 拔出梳子，吸取电泳液清洗样品孔，排除残余胶液
6. 上样及marker，一般1孔20ug，最多30ul；空余孔上样 1xloading buffer(电泳液稀释)
7. 电泳电压：浓缩胶约80V,分离胶约150V
8. 溴酚蓝迁移至凝胶2/3处即可停止电泳

   

   SDS-PAGE电泳例图

转膜

1. 转膜缓冲液的配制：

   1.5L 转膜缓冲液组成
   Reagent	Quantity (for 1.5 L)
   Tris	4.545 g
   甘氨酸	21.6 g
   UP水	1.2 L
   乙醇	300 mL*
   *：乙醇待水溶液体系完全溶解后再加入

2. 膜及其支撑膜浸入乙醇中活化5 min；
3. 转膜缓冲液倒入盘中，各层预先在盘中浸透
4. 按照2层泡沫-1层滤纸-gel(切割周围)-1层滤纸-2层泡沫，进行叠加，注意排出气泡，夹紧，放入电泳槽
5. 电泳约1h

WB

WB实验

1. 剪裁目标蛋白和参比蛋白的膜，浸入封闭液中，摇床15min
2. TBST配制：

   0.5L TBST缓冲液组成
   Reagent	Quantity (for 0.5 L)
   Tris	1.21 g
   NaCl	4 g
   UP水*	0.5 L
   吐温20**	2.5 mL（0.5%）
   *：Tris和NaCl溶解后HCl调整pH至7.6（pH计）
   **：调完pH再加吐温，使用用特殊的枪和吸头

3. 弃封闭液 加一抗5ml，膜浸透，避免漂浮或粘壁，37度摇床1h，4℃过夜 回收一抗，膜用TBST清洗5次，每次摇床5min后弃去，去除残余一抗
4. 加入二抗，37度摇床1h，TBST清洗5次
5. 使用314的BioRad凝胶成像系统，image lab软件，将缓冲液的膜浸泡至显影液中2min，转移至培养皿，放入样品盘，成像

   

   WB结果例图

   
   

   备注

   1. 实验操作：
      1. 制胶前用70%乙醇清洁并擦拭玻璃板。
      2. 内参一般不和样品同一块膜，单染方便抗体回收，只回收一抗，不回收二抗。一抗多为兔种属，二抗是抗兔的山羊抗，二抗基本只针对一抗的种属。抗体一般-20℃保存。
      3. 制好的胶尽快使用，不隔夜
      4. 上层溶液左中右位点均匀加入
      5. 该测定实验本身影响因素较多，所以n个重复合成一个样本进行SDS-PAGE，一组样本尽量一块凝胶进行分析。
      6. 预实验可省略bca，根据细胞密度简单确定上样体积，使用内参(cell固定表达蛋白，且相对量较为固定）进行相对定量
   2. 其他：
      1. 该实验用于药效评估，药效前应当先做毒性实验
      2. 细胞裂解液的成分：pmsf
      3. 封闭液的组成：BSA或奶粉溶液

   
   

   原理

   1. SDS-PAGE原理
      阴离子与蛋白质按比例（摩尔比）结合带上负电荷（SDS数量远超蛋白本身电荷数），消除蛋白质原有的电荷差异。SDS破坏蛋白质的氢键、疏水作用力等非共价键，破坏高级结构，解离为蛋白质亚基，蛋白质解聚为单体。（m/z决定电泳结果，即只与蛋白质分子量有关，而与电荷和分子形态无关）。为了确保蛋白质在电泳过程中处于变性展开状态，并且始终带有负电荷，在凝胶蛋白质样品和凝胶缓冲液中，都需要添加SDS。
   2. SDS-PAGE Loading buffer
      主要含有SDS、甘油、β-巯基乙醇（β-ME）、带负电荷的染料(常用溴酚蓝)，甘油可以使蛋白样品密度大于电泳缓冲液而沉入梳底。Β-巯基乙醇可以打开二硫键。而带有负电荷的染料，其分子量小于绝大多数的分子样品。迁移速率最快。样品制备好以后，上样之前需要将其加热5分钟，而使其变性展开。 <浓缩胶和> 丙烯酰胺(Arc)和甲叉双丙烯酰胺(Bis，作为聚丙烯酰胺的linker，形成孔洞结构)在催化剂(过硫酸铵，形成自由基)和加速剂（TEMD，二（N-二甲基）乙二胺，加速催化剂形成自由基）的作用下，形成的一种三维网状结构，允许蛋白质通过。可以通过改变丙烯酰胺的浓度来改变孔径的大小。高浓度凝胶孔径小，利于分离小分子蛋白；低浓度的凝胶孔径大，利于分离大分子蛋白。
      1. 电泳缓冲液：pH 8.3，含有SDS、Cl^-和甘氨酸（pI 5.97）。
      2. 上层浓缩胶：pH 6.8，孔径大，样品先进入浓缩胶，形成很窄的条带。因为甘氨酸显示电中性，与负电的Cl^-挤压蛋白质，使得条带变窄
      3. 下层分离胶：pH 8.8，孔径小，通过分子筛分离蛋白质。
   3. 成像原理
      增强化学发光法（ECL）：显影剂含有H₂O₂和鲁米诺（或其衍生物），二抗上的HRP（辣根过氧化物酶）的作用下，发出荧光。稳定性好，灵敏度高，成像性好，对仪器设备无特殊要求，是目前最常用的显影方法。
   4. 细胞裂解液
      主要是表面活性剂，破坏生物膜。RIPA含有SDS，脱氧胆酸钠，TritonX-100的混合溶液。

      蛋白定位	裂解液种类
      全细胞	NP - 40 或 RIPA
      细胞质（可溶性蛋白）	Tris - HCL
      细胞质（细胞骨架等不溶性蛋白）	Tris - Triton
      细胞膜	NP - 40 或 RIPA
      细胞核	RIPA
      线粒体	RIPA