常用细胞房操作

更换培养基

1. 更换频率1次/d。
2. 弃去旧培养基：
   1. 贴壁细胞（如癌细胞）：移液枪直接吸取培养基并弃去；
   2. 悬浮细胞：收集原培养基及cell置于EP管中，离心，弃上清：
   3. 半贴壁细胞：采用半换液，倾斜孔板或培养皿，移液枪吸取上层培养基弃去。
3. 加入新鲜培养基。培养基总量：10cm 培养皿6-10m。

贴壁细胞培养密度取决于培养器皿的表面积而悬浮细胞则由培养基的体积决定。

表1：贴壁细胞或悬浮细胞接种数量、培养基体积

培养器皿	每孔表面积 (cm²)	每孔培养基的 体积（ml）	贴壁细胞转染前一天 接种密度	悬浮细胞转染当 天接种密度
96孔板	0.3	0.1	5000±2500	2-5×105
24孔板	2	0.5	25000±10000	1-2.5×105
12孔板	4	1	50000±20000	2-5×105
6孔板	10	2	150000±50000	0.4-1×106
60mm培养皿	20	4	400000±100000	1-2.5×106
100mm培养皿	60	10	1×106±250000	2-5×106
*：乙醇待水溶液体系完全溶解后再加入

12孔板CELL铺板（给药用）

1. 细胞类型：肿瘤细胞(人源)（贴壁cell）
2. 操作
   1. 取培养皿，弃去培养基，加入2ml PBS清洗，弃去
   2. 加入2 mL胰酶，37 ℃消化2 min。
   3. 加含血清培养基2 mL（终止胰酶消化），转移至EP管中，离心，弃去上清，
   4. 加入培养基重悬，先向12孔板中每一孔加入0.5 mL含血清培养基，再添加0.5 mL cell重悬液（培养基）。先铺1孔，显微镜观察密度，根据需求调整重悬液或稀释液的体积。轻微晃匀，注明cell、操作、日期。
   5. 37℃孵育过夜。过夜后，细胞密度达到70-80%时给药。
3. 备注：
   1. 铺板前可以先在试管中混匀cell再铺板，更均匀。
   2. 胰酶消解时间取决于cell种类。过度消化会导致细胞膜蛋白损伤，影响细胞膜完整性和细胞贴壁；过度消化可能会使细胞聚集成团，需后续操作吹散，否则会影响细胞状态；过度消化会影响细胞表面受体的功能和完整性，从而影响细胞正常信号传导和功能表达。
   3. 一般一皿长满的肿瘤细胞可铺3块板(6 12 24孔板)，但是96孔板周围一圈的只添加PBS，仅在中心的60个孔铺细胞，60孔共铺约1/10 or 1/12 or 1/15皿细胞。因为本次实验的人源细胞生长比较慢，所以一皿cell铺2.5块板

原理

1. 胰酶
   1. 胰酶的作用原理： 胰酶是一种具有底物特异性的蛋白水解酶。贴壁细胞通常通过一组蛋白质（整合素）黏附在培养容器表面或胞外基质上，胰酶可分解这些蛋白质。加入胰酶后，细胞从扁平的贴壁状态慢慢转变成游离的球形状态，这是因为细胞失去附着力，趋向于选择最小能量配置，即球形。一般情况下，会在胰酶中添加EDTA螯合剂，用于辅助破坏细胞之间的钙依赖连接。
   2. 血清失活胰酶 血清中含有一些能够中和或抑制胰酶活性的因子。如：
      1. 酶抑制蛋白：可以结合胰酶，抑制胰酶活性，有效终止胰酶对细胞的消化作用。
      2. 钙、镁离子：帮助稳定细胞膜和细胞间的连接，修复胰酶导致的细胞粘附力下降。
      3. 营养物质和生长因子：可修复受损的细胞膜，有助于维持细胞的正常生理状态，保障分离过程中的细胞活性和完整性。